JCRB1028 JHH-2
細胞情報
Important Notice(s)On the agreement for distribution of JHH series cell lines, NOZ and OZ
細胞種類:一般細胞 (細胞分譲手数料はこちら)
細胞番号(JCRB) | JCRB1028 | 細胞名 | JHH-2 |
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生物種(日本語) | ヒト | 組織名(日本語) | 肝臓, 胆嚢 |
コメント(日本語) | 肝細胞がん | プロフィール | Human hepatocellular carcinoma cell line (Ed.II). |
別名 | 動物名 | human | |
系統名 | 学名・属名 | Homo | |
種名 | sapiens | 性別 | M |
年齢・月齢 | 57 | 細胞識別情報 | available |
(癌)原発組織名 | liver, gallbladder | 病歴情報 | hepatocellular carcinoma. HBs-Ag(-), HBs-Ab(-), AFP=6,100ng/ml, CEA 4.6 ng/ml. |
転移の有無(Y/N) | Yes | (癌)転移組織名 | ascites |
遺伝的性質 | Integration of the HBV-DNA was not observed. | 細胞寿命 | infinite |
クライシスPDL | 形態 | spindle shaped cells | |
一般性状 | hepatoma (Ed.II). HBs-Ag(-). The cells can be transplantable to nude mice. Mode of chromosome is 70. | 細胞分類 | tumor |
細胞樹立者名 | S.Honma & Nagamori,S. | 細胞寄託者 | Nagamori,S. |
分譲時制限 | Restricted: Cell's developer's approval is required | コメント | Cell Bank will handle to get the approval but the depositor may contact to the requested person directly. |
入手年 | 1988 | 培養培地 | Williams'E medium with 10% fetal calf serum originally and later 2% FCS is used for 5 years. (alternative MEM 90% + FBS 10%) |
継代方法 | Cells are treated with 0.02% EDTA and 0.25% trypsin | 継代時細胞数 | 1 x 10^5 |
人種 | Japanese | 炭酸ガス濃度 | 5 % |
採取組織名 | liver | 組織型 |
ウイルスDNA・RNA検出検査 (Detection of virus genome fragment by Real-time PCR) | |||||||||
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ウイルスDNA 検出検査 |
tested | ウイルスRNA 検出検査 |
tested | ||||||
CMV | - | parvoB19 | - | HCV | - | HTLV-1 | - | ||
EBV | - | HBV | - | HIV-1 | - | HTLV-2 | - | ||
HHV6 | - | HTLV-1 | - | HIV-2 | - | HAV | - | ||
HHV7 | - | HTLV-2 | - |
-/negative. +/positive. nt/not tested. (positive (+) does not immediately mean the production of infectious viral particles.) |
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BKV | - | HIV-1 | - | ||||||
JCV | - | HIV-2 | - | ||||||
ADV | - | HPV18 | - | ||||||
Notes |
Reference | |
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Pubmed id:1701409 | Integration of hepatitis B virus DNA into cells of six established human hepatocellular carcinoma cell lines. Fujise K,Nagamori S,Hasumura S,Homma S,Sujino H,Matsuura T,Shimizu K,Niiya M,Kameda H,Fujita K Hepatogastroenterology. 1990 Oct;37(5):457-60 |
Pubmed id:2484807 | [Protein secretion of human cultured liver cells]. Nagamori S,Fujise K,Hasumura S,Homma S,Sujino H,Matsuura T,Shimizu K,Niiya M,Kameda H Hum Cell. 1988 Dec;1(4):382-90 |
Research results by users. Click! | |
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Pubmed id:22309595 |
Fibroblast growth factor 19 expression correlates with tumor progression and poorer prognosis of hepatocellular carcinoma. Miura S,Mitsuhashi N,Shimizu H,Kimura F,Yoshidome H,Otsuka M,Kato A,Shida T,Okamura D,Miyazaki M BMC Cancer. 2012 Feb 6;12():56 |
Pubmed id:20044606 |
Infrequent amplification of JUN in hepatocellular carcinoma. Endo M,Yasui K,Nakajima T,Gen Y,Tsuji K,Dohi O,Zen K,Mitsuyoshi H,Minami M,Itoh Y,Taniwaki M,Tanaka S,Arii S,Okanoue T,Yoshikawa T Anticancer Res. 2009 Dec;29(12):4989-94 |
Pubmed id:17295779 |
Cimetidine inhibits epidermal growth factor-induced cell signaling. Fujikawa T,Shiraha H,Nakanishi Y,Takaoka N,Ueda N,Suzuki M,Shiratori Y J Gastroenterol Hepatol. 2007 Mar;22(3):436-43 |
Pubmed id:9446792 |
Cyclin E overexpression responsible for growth of human hepatic tumors with p21WAF1/CIP1/SDI1. Tsuji T,Miyazaki M,Fushimi K,Mihara K,Inoue Y,Ohashi R,Ohtsubo M,Hamazaki K,Furusako S,Namba M Biochem Biophys Res Commun. 1998 Jan 14;242(2):317-21 |
Pubmed id:8835345 |
Persistence of hepatitis C virus RNA in established human hepatocellular carcinoma cell lines. Tsuboi S,Nagamori S,Miyazaki M,Mihara K,Fukaya K,Teruya K,Kosaka T,Tsuji T,Namba M J Med Virol. 1996 Feb;48(2):133-40 |
Pubmed id:1315167 |
Induction of allogeneic tumour- and lymphokine-activated lymphocytes against hepatocellular carcinoma. Yasumura S,Higuchi K,Hioki O,Okada K,Tsukishiro T,Tsuchida T,Miyagiwa M,Nambu S,Yasuyama T,Inoue K J Gastroenterol Hepatol. 1992 Mar-Apr;7(2):136-41 |
Pubmed id:1701409 |
Integration of hepatitis B virus DNA into cells of six established human hepatocellular carcinoma cell lines. Fujise K,Nagamori S,Hasumura S,Homma S,Sujino H,Matsuura T,Shimizu K,Niiya M,Kameda H,Fujita K Hepatogastroenterology. 1990 Oct;37(5):457-60 |
Pubmed id:3005723 |
[Effects of hyperthermia on the proliferation and viability of cultured human hepatobiliary carcinoma cells]. Homma S,Nagamori S,Fujise K,Sujino H,Matsuura T,Simizu K,Kameda H Nihon Shokakibyo Gakkai Zasshi. 1985 Sep;82(9):2043-8 |
Pubmed id:none |
THE MORPHOLOGICAL STUDY OF HUMAN CULTURED HEPATOMA CELLS BY A NEW PLASMA POLYMERIZATION REPLICA METHOD AND TEM Hajime SUJINO Jikeikai Medical Journal 33(4), 379-400 (1986) |
Pubmed id:none |
樹立ヒト肝癌株細胞中のB型肝炎ウイルスゲノム 藤瀬 清隆, 藤多 和信, 永森 静志, 蓮村 哲, 本間 定, 筋野 甫, 松浦 知和, 清水 恵一郎, 新谷 稔, 大野 典也, 亀田 治男 肝臓 29(5), 697-698 (1988) |
Images |
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Movies |
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LOT Information
細胞番号 | JCRB1028 | 細胞名 | |
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培養ロット番号 | 09072011 | 培養種別 | distribution |
培地 | Williams' medium E with 2% fetal bovine serum (FBS: GIBCO Cat. # 10099) | 培養温度 | 37 C |
継代時細胞数(濃度) | 1.0 - 1.5 x 10^4 cells/mL | 継代方法 | Cells were harvested after treatment with 0.25% trypsin and 0.02% EDTA. |
増殖速度 | approx. 33 hrs. | 凍結時生細胞濃度 | 8.2 x 10^5 |
凍結時生細胞率 | 93.1 | 使用抗生物質 | free |
継代数 | P25 | PDL数(プライマリ) | |
マイコプラズマ検出 | - | 細菌汚染検出 | - |
真菌汚染検出 | - | アイソザイム検査・動物名 | Confirmed as human by NP, G6PD (type B), MD. |
染色体モード | 染色体情報 | ||
表面抗原 | DNA Profile (STR) | ||
接着性 | Yes | 導入外部遺伝子 | |
凍結培地 | 10% DMSO, 20% FBS - Williams' medium E. | 炭酸ガス濃度 | 5% |
解凍後生細胞率 | 追加情報 |
細胞番号 | JCRB1028 | 細胞名 | |
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培養ロット番号 | 11022010 | 培養種別 | distribution |
培地 | Williams' medium E with 2% fetal bovine serum (GIBCO Cat. # 10099) | 培養温度 | 37 C |
継代時細胞数(濃度) | 1 - 3 x 10^4 cells/ml | 継代方法 | Cells were harvested after treatment with 0.25% trypsin and 0.02% EDTA. |
増殖速度 | approx. 2 days. | 凍結時生細胞濃度 | 5.1 x 10^5 |
凍結時生細胞率 | 83.6 | 使用抗生物質 | fre |
継代数 | P25 | PDL数(プライマリ) | |
マイコプラズマ検出 | - | 細菌汚染検出 | - |
真菌汚染検出 | - | アイソザイム検査・動物名 | Confirmed as human by NP, G6PD (type B), MD. |
染色体モード | 染色体情報 | ||
表面抗原 | DNA Profile (STR) | ||
接着性 | Yes | 導入外部遺伝子 | |
凍結培地 | 10% DMSO, 20% FBS - Williams' medium E | 炭酸ガス濃度 | 5% |
解凍後生細胞率 | 追加情報 |
細胞番号 | JCRB1028 | 細胞名 | |
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培養ロット番号 | 01222008 | 培養種別 | distribution |
培地 | Williams' E medium with 2% FBS. A higher serum concentration (10%) can be used for good growth. (FBS lot; GIBCO 484375) | 培養温度 | 37 C |
継代時細胞数(濃度) | 1 - 2 x 10^4 cells/ml | 継代方法 | 0.25% trypsin and 0.02% EDTA |
増殖速度 | 35 - 70 hrs | 凍結時生細胞濃度 | 6.0 x 10^5 |
凍結時生細胞率 | 94.4 | 使用抗生物質 | free |
継代数 | P25 | PDL数(プライマリ) | |
マイコプラズマ検出 | - | 細菌汚染検出 | - |
真菌汚染検出 | - | アイソザイム検査・動物名 | Confirmed as human by NP, G6PD (type B), LD. |
染色体モード | 染色体情報 | ||
表面抗原 | DNA Profile (STR) | ||
接着性 | Yes | 導入外部遺伝子 | |
凍結培地 | 10% DMSO, 20% FBS - Williams' E medium | 炭酸ガス濃度 | 5% |
解凍後生細胞率 | 追加情報 |
細胞番号 | JCRB1028 | 細胞名 | JHH-2 |
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培養ロット番号 | 02072003 | 培養種別 | distribution |
培地 | Williams' E medium with 2% fetal calf serum (Intergen RB52305). | 培養温度 | 37 C |
継代時細胞数(濃度) | 4.0 x 10^3 cells/sq.cm. | 継代方法 | Cells harvested after treatment with 0.2% trypsin and 0.02% EDTA. Subculture once a week. |
増殖速度 | NT | 凍結時生細胞濃度 | 1.3 x 10^6 |
凍結時生細胞率 | 75.6 | 使用抗生物質 | free |
継代数 | P22 | PDL数(プライマリ) | NT |
マイコプラズマ検出 | - | 細菌汚染検出 | - |
真菌汚染検出 | - | アイソザイム検査・動物名 | G6PD(type B), NP, LDH examined. Human not HeLa. |
染色体モード | NT | 染色体情報 | NT |
表面抗原 | NT | DNA Profile (STR) | |
接着性 | Yes | 導入外部遺伝子 | NT |
凍結培地 | Culture medium with 5% DMSO. | 炭酸ガス濃度 | 5 % |
解凍後生細胞率 | 追加情報 |
Images |
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細胞番号 | JCRB1028 | 細胞名 | JHH-2 |
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培養ロット番号 | 05022018 | 培養種別 | distribution |
培地 | Williams' medium E with 2% fetal bovine serum (FBS: Sigma Cat. # 172012) | 培養温度 | 37 C |
継代時細胞数(濃度) | 1.3 - 3.3 x 10^4 cells/mL | 継代方法 | Cells were harvested after treatment with 0.25% trypsin and 0.02% EDTA. |
増殖速度 | approx. 59 hrs. | 凍結時生細胞濃度 | 9.3 x 10^5 |
凍結時生細胞率 | 90.0 | 使用抗生物質 | free |
継代数 | P26 | PDL数(プライマリ) | |
マイコプラズマ検出 | - | 細菌汚染検出 | - |
真菌汚染検出 | - | アイソザイム検査・動物名 | |
染色体モード | 染色体情報 | ||
表面抗原 | DNA Profile (STR) | ||
接着性 | Yes | 導入外部遺伝子 | |
凍結培地 | 10% DMSO, 20% FBS - Williams' medium E | 炭酸ガス濃度 | 5% |
解凍後生細胞率 | 90.0 | 追加情報 |