JCRB1029 JHH-5
細胞情報
Important Notice(s)On the agreement for distribution of JHH series cell lines, NOZ and OZ
細胞種類:一般細胞 (細胞分譲手数料はこちら)
細胞番号(JCRB) | JCRB1029 | 細胞名 | JHH-5 |
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生物種(日本語) | ヒト | 組織名(日本語) | 肝臓, 胆嚢 |
コメント(日本語) | 肝細胞がん | プロフィール | Human hepatocellular carcinoma (Ed.I) established from small liver cancer. |
別名 | 動物名 | human | |
系統名 | 学名・属名 | Homo | |
種名 | sapiens | 性別 | M |
年齢・月齢 | 50 | 細胞識別情報 | available |
(癌)原発組織名 | liver, gallbladder | 病歴情報 | small liver cancer observed in the chronic hepatitis |
転移の有無(Y/N) | No | (癌)転移組織名 | |
遺伝的性質 | Integration of the HBV-DNA was not observed. | 細胞寿命 | infinite |
クライシスPDL | 形態 | epithelial-like | |
一般性状 | Hepatocellular carcinoma Ed.I. Human albumin secretion and AFP(110ng/ml/48hrs) observed in the supernatant of the cell culture. HBs-Ag(-). | 細胞分類 | tumor |
細胞樹立者名 | Sujino,H., Matsuura,T.&Nagamori,S. | 細胞寄託者 | Nagamori,S. |
分譲時制限 | Require negotiation and agreement from Dr.Nagamori before shipping. | コメント | Cell Bank will handle to get the approval but the depositor may contact to the requested person directly. |
入手年 | 2001 | 培養培地 | Williams'E medium with 10% fetal calf serum. |
継代方法 | Cells are harvested with 0.2% trypsin and 0.02% EDTA. | 継代時細胞数 | not defined |
人種 | Japanese | 炭酸ガス濃度 | 5 % |
採取組織名 | resected liver sample | 組織型 |
ウイルスDNA・RNA検出検査 (Detection of virus genome fragment by Real-time PCR) | |||||||||
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ウイルスDNA 検出検査 |
tested | ウイルスRNA 検出検査 |
tested | ||||||
CMV | - | parvoB19 | - | HCV | - | HTLV-1 | - | ||
EBV | - | HBV | - | HIV-1 | - | HTLV-2 | - | ||
HHV6 | - | HTLV-1 | - | HIV-2 | - | HAV | - | ||
HHV7 | - | HTLV-2 | - |
-/negative. +/positive. nt/not tested. (positive (+) does not immediately mean the production of infectious viral particles.) |
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BKV | - | HIV-1 | - | ||||||
JCV | - | HIV-2 | - | ||||||
ADV | - | HPV18 | - | ||||||
Notes |
Reference | |
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Pubmed id:1701409 | Integration of hepatitis B virus DNA into cells of six established human hepatocellular carcinoma cell lines. Fujise K,Nagamori S,Hasumura S,Homma S,Sujino H,Matsuura T,Shimizu K,Niiya M,Kameda H,Fujita K Hepatogastroenterology. 1990 Oct;37(5):457-60 |
Pubmed id:2484807 | [Protein secretion of human cultured liver cells]. Nagamori S,Fujise K,Hasumura S,Homma S,Sujino H,Matsuura T,Shimizu K,Niiya M,Kameda H Hum Cell. 1988 Dec;1(4):382-90 |
Research results by users. Click! | |
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Pubmed id:22309595 |
Fibroblast growth factor 19 expression correlates with tumor progression and poorer prognosis of hepatocellular carcinoma. Miura S,Mitsuhashi N,Shimizu H,Kimura F,Yoshidome H,Otsuka M,Kato A,Shida T,Okamura D,Miyazaki M BMC Cancer. 2012 Feb 6;12():56 |
Pubmed id:20044606 |
Infrequent amplification of JUN in hepatocellular carcinoma. Endo M,Yasui K,Nakajima T,Gen Y,Tsuji K,Dohi O,Zen K,Mitsuyoshi H,Minami M,Itoh Y,Taniwaki M,Tanaka S,Arii S,Okanoue T,Yoshikawa T Anticancer Res. 2009 Dec;29(12):4989-94 |
Pubmed id:15349899 |
Proteomic signature corresponding to alpha fetoprotein expression in liver cancer cells. Yokoo H,Kondo T,Fujii K,Yamada T,Todo S,Hirohashi S Hepatology. 2004 Sep;40(3):609-17 |
Pubmed id:15205326 |
Involvement of interferon regulatory factor 1 and S100C/A11 in growth inhibition by transforming growth factor beta 1 in human hepatocellular carcinoma cells. Miyazaki M,Sakaguchi M,Akiyama I,Sakaguchi Y,Nagamori S,Huh NH Cancer Res. 2004 Jun 15;64(12):4155-61 |
Pubmed id:10766424 |
Involvement of insulin-like growth factor binding protein-3 in the retinoic acid receptor-alpha-mediated inhibition of hepatocellular carcinoma cell proliferation. Murakami K,Matsuura T,Hasumura S,Nagamori S,Yamada Y,Saiki I Cancer Lett. 2000 Apr 3;151(1):63-70 |
Pubmed id:10933057 |
Invasiveness of hepatocellular carcinoma cell lines: contribution of membrane-type 1 matrix metalloproteinase. Murakami K,Sakukawa R,Ikeda T,Matsuura T,Hasumura S,Nagamori S,Yamada Y,Saiki I Neoplasia. 1999 Nov;1(5):424-30 |
Pubmed id:9446792 |
Cyclin E overexpression responsible for growth of human hepatic tumors with p21WAF1/CIP1/SDI1. Tsuji T,Miyazaki M,Fushimi K,Mihara K,Inoue Y,Ohashi R,Ohtsubo M,Hamazaki K,Furusako S,Namba M Biochem Biophys Res Commun. 1998 Jan 14;242(2):317-21 |
Pubmed id:8835345 |
Persistence of hepatitis C virus RNA in established human hepatocellular carcinoma cell lines. Tsuboi S,Nagamori S,Miyazaki M,Mihara K,Fukaya K,Teruya K,Kosaka T,Tsuji T,Namba M J Med Virol. 1996 Feb;48(2):133-40 |
Pubmed id:1701409 |
Integration of hepatitis B virus DNA into cells of six established human hepatocellular carcinoma cell lines. Fujise K,Nagamori S,Hasumura S,Homma S,Sujino H,Matsuura T,Shimizu K,Niiya M,Kameda H,Fujita K Hepatogastroenterology. 1990 Oct;37(5):457-60 |
Pubmed id:2856500 |
[Effects of TNF on human hepatocellular carcinoma cell lines and their modification by hyperthermia]. Hasumura S,Nagamori S,Fujise K,Homma S,Sujino H,Matsuura T,Shimizu K,Niiya M,Kameda H,Satomi N Hum Cell. 1988 Jun;1(2):238-44 |
Pubmed id:none |
ヒト肝癌細胞株に対するTumor necrosis factorの影響 蓮村哲 永森静志 藤瀬清隆 本間定 筋野甫 松浦知和 清水恵一郎 新谷稔 里見信子 医学のあゆみ 143(8), 655-656 (1987) |
Pubmed id:none |
樹立ヒト肝癌株細胞中のB型肝炎ウイルスゲノム 藤瀬 清隆, 藤多 和信, 永森 静志, 蓮村 哲, 本間 定, 筋野 甫, 松浦 知和, 清水 恵一郎, 新谷 稔, 大野 典也, 亀田 治男 肝臓 29(5), 697-698 (1988) |
Pubmed id:none |
株化肝細胞癌の遺伝子発現 Gene expression in human hepatocellular carcinoma cell lines 村上 孝司 山田 雄次 済木 育夫 松浦 知和 蓮村 哲 永森 静志 組織培養研究 18(3), 221-228 (1999) |
Images |
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Movies |
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LOT Information
細胞番号 | JCRB1029 | 細胞名 | |
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培養ロット番号 | 03022011 | 培養種別 | distribution |
培地 | Williams' E medium with 10% fetal bovine serum (GIBCO Cat. # 10099) | 培養温度 | 37 C |
継代時細胞数(濃度) | approx. 1.2 x 10^5 cells/ml | 継代方法 | Cells were harvested after treatment with 0.25% trypsin and 0.02% EDTA. |
増殖速度 | approx. 2 days | 凍結時生細胞濃度 | 3.9 x 10^6 |
凍結時生細胞率 | 94.9 | 使用抗生物質 | free |
継代数 | Unknown (9 at bank) | PDL数(プライマリ) | |
マイコプラズマ検出 | - | 細菌汚染検出 | - |
真菌汚染検出 | - | アイソザイム検査・動物名 | Confirmed as human by NP, G6PD (type B), MD. |
染色体モード | 染色体情報 | ||
表面抗原 | DNA Profile (STR) | ||
接着性 | Yes | 導入外部遺伝子 | |
凍結培地 | 10% DMSO, 20% FBS - Williams' E medium | 炭酸ガス濃度 | 5% |
解凍後生細胞率 | 追加情報 |
細胞番号 | JCRB1029 | 細胞名 | JHH-5 |
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培養ロット番号 | 07152009 | 培養種別 | distribution |
培地 | Williams'E medium with10% heat inactivated fetal bovine serum(Hyclone GRD0051). | 培養温度 | 37 C |
継代時細胞数(濃度) | 1.8x10^4 cells/sq.cm | 継代方法 | Cells were harvested after treatment with 0.25%(GIBCO) trypsin and 0.02% EDTA. |
増殖速度 | NT | 凍結時生細胞濃度 | 1.7x10^6 |
凍結時生細胞率 | 96.8 | 使用抗生物質 | NT |
継代数 | p8* | PDL数(プライマリ) | NT |
マイコプラズマ検出 | - | 細菌汚染検出 | - |
真菌汚染検出 | - | アイソザイム検査・動物名 | NT |
染色体モード | NT | 染色体情報 | NT |
表面抗原 | NT | DNA Profile (STR) | D5S818:13 D13S317:9 D7S820:10,12 D16S539:9,10 VWA:17,19 TH01:9 AM:X,Y TPOX:11 CSF1PO:9 |
接着性 | Yes | 導入外部遺伝子 | NT |
凍結培地 | Cell Banker BLC-1(Nihon Zenyaku Industries) | 炭酸ガス濃度 | 5 % |
解凍後生細胞率 | 追加情報 |
Images |
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細胞番号 | JCRB1029 | 細胞名 | JHH-5 |
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培養ロット番号 | 03262003 | 培養種別 | distribution |
培地 | William's E medium containing 10% fetal calf serum(Intergen RB52305). | 培養温度 | 37 C |
継代時細胞数(濃度) | 4.2 x 10^4 cells/sq.cm. | 継代方法 | Cells are harvested after treatment with 0.20% trypsin. |
増殖速度 | NT | 凍結時生細胞濃度 | 3.0 x 10^6 |
凍結時生細胞率 | 96.1 | 使用抗生物質 | free |
継代数 | P8* | PDL数(プライマリ) | NT |
マイコプラズマ検出 | - | 細菌汚染検出 | - |
真菌汚染検出 | - | アイソザイム検査・動物名 | G6PD(typeB), NP, LDH examined. Human, not HeLa. |
染色体モード | NT | 染色体情報 | NT |
表面抗原 | NT | DNA Profile (STR) | D5S818:13 D13S317:9 D7S820:10,12 D16S539:9,10 VWA:17,19 TH01:9 AM:XY TPOX:11 CSF1PO:9 |
接着性 | Yes | 導入外部遺伝子 | NT |
凍結培地 | Culture medium with 5% DMSO. | 炭酸ガス濃度 | 5 % |
解凍後生細胞率 | 追加情報 |
Images |
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細胞番号 | JCRB1029 | 細胞名 | |
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培養ロット番号 | 03112003 | 培養種別 | distribution |
培地 | William's E medium with 10% fetal bovine serum (FBS lot; BioWhittaker 0S069F) | 培養温度 | 37 C |
継代時細胞数(濃度) | 2 x 10^4 cells/sq.cm | 継代方法 | 0.2% trypsin and 0.02% EDTA |
増殖速度 | D.T. = ca. 40 hrs | 凍結時生細胞濃度 | 2.1 x 10^6 |
凍結時生細胞率 | 91.7 | 使用抗生物質 | free |
継代数 | Unknown (8 at bank) | PDL数(プライマリ) | |
マイコプラズマ検出 | - | 細菌汚染検出 | - |
真菌汚染検出 | - | アイソザイム検査・動物名 | Confirmed as human by NP, G6PD (type B), LD. |
染色体モード | 染色体情報 | ||
表面抗原 | DNA Profile (STR) | ||
接着性 | Yes | 導入外部遺伝子 | |
凍結培地 | 10% DMSO, 20% FBS-culture medium | 炭酸ガス濃度 | 5% |
解凍後生細胞率 | 追加情報 |
細胞番号 | JCRB1029 | 細胞名 | JHH-5 |
---|---|---|---|
培養ロット番号 | 10242014 | 培養種別 | distribution |
培地 | William's E medium with 10% fetal bovine serum (FBS; GIBCO Cat. # 10091) | 培養温度 | 37 C |
継代時細胞数(濃度) | approx. 1 x 10^5 cells/mL | 継代方法 | Cells were harvested after treatment with 0.25% trypsin and 0.02% EDTA. |
増殖速度 | 凍結時生細胞濃度 | 3.7 x 10^6 | |
凍結時生細胞率 | 92 | 使用抗生物質 | free |
継代数 | Unknown (9 at bank) | PDL数(プライマリ) | |
マイコプラズマ検出 | - | 細菌汚染検出 | - |
真菌汚染検出 | - | アイソザイム検査・動物名 | |
染色体モード | 染色体情報 | ||
表面抗原 | DNA Profile (STR) | D5S818:13 D13S317:9 D7S820:10,12 D16S539:9,10 VWA:17,19 TH01:9 AM:X,Y TPOX:11 CSF1PO:9 |
|
接着性 | Yes | 導入外部遺伝子 | |
凍結培地 | 10% DMSO, 20% FBS - Williams E medium | 炭酸ガス濃度 | 5% |
解凍後生細胞率 | 92 | 追加情報 |
細胞番号 | JCRB1029 | 細胞名 | JHH-5 |
---|---|---|---|
培養ロット番号 | 09272018 | 培養種別 | distribution |
培地 | Williams' E medium with 10% fetal bovine serum (FBS; Sigma Cat. # 172012) | 培養温度 | 37 C |
継代時細胞数(濃度) | 0.6 - 2.0 x 10^5 cells/mL | 継代方法 | Cells were harvested after treatment with 0.25% trypsin and 0.02% EDTA. |
増殖速度 | approx. 29 hrs. | 凍結時生細胞濃度 | 3.7 x 10^6 |
凍結時生細胞率 | 93.4 | 使用抗生物質 | free |
継代数 | Unknown (9 at bank) | PDL数(プライマリ) | |
マイコプラズマ検出 | - | 細菌汚染検出 | - |
真菌汚染検出 | - | アイソザイム検査・動物名 | |
染色体モード | 染色体情報 | ||
表面抗原 | DNA Profile (STR) | ||
接着性 | Yes | 導入外部遺伝子 | |
凍結培地 | 10% DMSO, 20% FBS - Williams' E medium | 炭酸ガス濃度 | 5% |
解凍後生細胞率 | 91.6 | 追加情報 |
細胞番号 | JCRB1029 | 細胞名 | JHH-5 |
---|---|---|---|
培養ロット番号 | 08252021 | 培養種別 | distribution |
培地 | Williams' E medium with 10% fetal bovine serum (FBS; Biowest Cat. # S1820-500) | 培養温度 | 37 C |
継代時細胞数(濃度) | 0.9 - 1.6 x 10^5 cells/mL | 継代方法 | Cells were harvested after treatment with 0.25% trypsin and 0.02% EDTA. |
増殖速度 | approx. 1 day | 凍結時生細胞濃度 | 3.2 x 10^6 |
凍結時生細胞率 | 89.0 | 使用抗生物質 | free |
継代数 | Unknown (9 at bank) | PDL数(プライマリ) | |
マイコプラズマ検出 | - | 細菌汚染検出 | - |
真菌汚染検出 | - | アイソザイム検査・動物名 | |
染色体モード | 染色体情報 | ||
表面抗原 | DNA Profile (STR) | ||
接着性 | Yes | 導入外部遺伝子 | |
凍結培地 | 10% DMSO, 20% FBS - William's E medium | 炭酸ガス濃度 | 5% |
解凍後生細胞率 | 94.1 | 追加情報 |