JCRB1031 JHH-7
細胞情報
Important Notice(s)JCRB1031 JHH-7: HBV Integration
On the agreement for distribution of JHH series cell lines, NOZ and OZ
細胞種類:一般細胞 (細胞分譲手数料はこちら)
細胞番号(JCRB) | JCRB1031 | 細胞名 | JHH-7 |
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生物種(日本語) | ヒト | 組織名(日本語) | 肝臓, 胆嚢 |
コメント(日本語) | 肝細胞がん, HBV遺伝子の組込がある | プロフィール | HBV integrated human hepato cellular carcinoma cell line. |
別名 | 動物名 | human | |
系統名 | 学名・属名 | Homo | |
種名 | sapiens | 性別 | M |
年齢・月齢 | 53 | 細胞識別情報 | available |
(癌)原発組織名 | liver, gallbladder | 病歴情報 | HBs-Ag positive hepato cellular carcinoma (Ed.III) with liver cirrhosis. HBs-Ag(+), HBs-Ab(-), HBe-Ag(-), HBe-Ab(+), HBc-Ab(+), AFP positive (110,000 ng/ml). |
転移の有無(Y/N) | (癌)転移組織名 | ||
遺伝的性質 | HBV-DNA integration observed. 6.0/2.5Kb bands by HindIII were observed. | 細胞寿命 | infinite |
クライシスPDL | 形態 | epithelial-like | |
一般性状 | 細胞分類 | tumor | |
細胞樹立者名 | Honma,S. Fujise,K. Nagamori,S. | 細胞寄託者 | Nagamori,S. |
分譲時制限 | Require negotiation and agreement from Dr.Nagamori before shipping. | コメント | Cell Bank will handle to get the approval but the depositor may contact to the requested person directly. |
入手年 | 2001 | 培養培地 | William's E medium with 10% fetal calf serum. |
継代方法 | Cells harvested after treatment with 0.25% trypsin and 0.02% EDTA. | 継代時細胞数 | Not defined. |
人種 | Japanese | 炭酸ガス濃度 | 5 % |
採取組織名 | liver | 組織型 | hepato cellular carcinoma |
ウイルスDNA・RNA検出検査 (Detection of virus genome fragment by Real-time PCR) | |||||||||
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ウイルスDNA 検出検査 |
tested | ウイルスRNA 検出検査 |
tested | ||||||
CMV | - | parvoB19 | - | HCV | - | HTLV-1 | - | ||
EBV | - | HBV | + | HIV-1 | - | HTLV-2 | - | ||
HHV6 | - | HTLV-1 | - | HIV-2 | - | HAV | - | ||
HHV7 | - | HTLV-2 | - |
-/negative. +/positive. nt/not tested. (positive (+) does not immediately mean the production of infectious viral particles.) |
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BKV | - | HIV-1 | - | ||||||
JCV | - | HIV-2 | - | ||||||
ADV | - | HPV18 | - | ||||||
Notes | PCR test for HB virus genome fragment was positive, but the integrated HB virus genome was incomplete, and therefore HB virus is not produced by JHH-7. Nihon Shokakibyo Gakkai Zasshi. 1990 Sep;87(9):1851-5. |
Reference | |
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Pubmed id:1701409 | Integration of hepatitis B virus DNA into cells of six established human hepatocellular carcinoma cell lines. Fujise K,Nagamori S,Hasumura S,Homma S,Sujino H,Matsuura T,Shimizu K,Niiya M,Kameda H,Fujita K Hepatogastroenterology. 1990 Oct;37(5):457-60 |
Pubmed id:2484807 | [Protein secretion of human cultured liver cells]. Nagamori S,Fujise K,Hasumura S,Homma S,Sujino H,Matsuura T,Shimizu K,Niiya M,Kameda H Hum Cell. 1988 Dec;1(4):382-90 |
Research results by users. Click! | |
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Pubmed id:22309595 |
Fibroblast growth factor 19 expression correlates with tumor progression and poorer prognosis of hepatocellular carcinoma. Miura S,Mitsuhashi N,Shimizu H,Kimura F,Yoshidome H,Otsuka M,Kato A,Shida T,Okamura D,Miyazaki M BMC Cancer. 2012 Feb 6;12():56 |
Pubmed id:21725613 |
Growth inhibition by NVP-BEZ235, a dual PI3K/mTOR inhibitor, in hepatocellular carcinoma cell lines. Masuda M,Shimomura M,Kobayashi K,Kojima S,Nakatsura T Oncol Rep. 2011 Nov;26(5):1273-9 |
Pubmed id:20044606 |
Infrequent amplification of JUN in hepatocellular carcinoma. Endo M,Yasui K,Nakajima T,Gen Y,Tsuji K,Dohi O,Zen K,Mitsuyoshi H,Minami M,Itoh Y,Taniwaki M,Tanaka S,Arii S,Okanoue T,Yoshikawa T Anticancer Res. 2009 Dec;29(12):4989-94 |
Pubmed id:19142034 |
Contribution of AP-1 interference induced by TAC-101 to tumor growth suppression in a hepatocellular carcinoma model. Eshima K,Fukaya S,Sugimoto A,Mori T,Yokoi H,Yamamoto Y,Sugiura S,Honda S,Masuko N,Murakami K,Yamasaki Y,Kagechika H Tumour Biol. 2009;30(1):1-7 |
Pubmed id:16160184 |
Formation of vesicular stomatitis virus pseudotypes bearing surface proteins of hepatitis B virus. Saha MN,Tanaka A,Jinno-Oue A,Shimizu N,Tamura K,Shinagawa M,Chiba J,Hoshino H J Virol. 2005 Oct;79(19):12566-74 |
Pubmed id:15349899 |
Proteomic signature corresponding to alpha fetoprotein expression in liver cancer cells. Yokoo H,Kondo T,Fujii K,Yamada T,Todo S,Hirohashi S Hepatology. 2004 Sep;40(3):609-17 |
Pubmed id:12395321 |
Synergistic induction of apoptosis by acyclic retinoid and interferon-beta in human hepatocellular carcinoma cells. Obora A,Shiratori Y,Okuno M,Adachi S,Takano Y,Matsushima-Nishiwaki R,Yasuda I,Yamada Y,Akita K,Sano T,Shimada J,Kojima S,Okano Y,Friedman SL,Moriwaki H Hepatology. 2002 Nov;36(5):1115-24 |
Pubmed id:11983450 |
Acyclic retinoid induces partial differentiation, down-regulates telomerase reverse transcriptase mRNA expression and telomerase activity, and induces apoptosis in human hepatoma-derived cell lines. Yasuda I,Shiratori Y,Adachi S,Obora A,Takemura M,Okuno M,Shidoji Y,Seishima M,Muto Y,Moriwaki H J Hepatol. 2002 May;36(5):660-71 |
Pubmed id:10766424 |
Involvement of insulin-like growth factor binding protein-3 in the retinoic acid receptor-alpha-mediated inhibition of hepatocellular carcinoma cell proliferation. Murakami K,Matsuura T,Hasumura S,Nagamori S,Yamada Y,Saiki I Cancer Lett. 2000 Apr 3;151(1):63-70 |
Pubmed id:10933057 |
Invasiveness of hepatocellular carcinoma cell lines: contribution of membrane-type 1 matrix metalloproteinase. Murakami K,Sakukawa R,Ikeda T,Matsuura T,Hasumura S,Nagamori S,Yamada Y,Saiki I Neoplasia. 1999 Nov;1(5):424-30 |
Pubmed id:9932610 |
4-[3,5-Bis(trimethylsilyl)benzamido] benzoic acid (TAC-101) inhibits the intrahepatic spread of hepatocellular carcinoma and prolongs the life-span of tumor-bearing animals. Murakami K,Matsuura T,Sano M,Hashimoto A,Yonekura K,Sakukawa R,Yamada Y,Saiki I Clin Exp Metastasis. 1998 Oct;16(7):633-43 |
Pubmed id:9446792 |
Cyclin E overexpression responsible for growth of human hepatic tumors with p21WAF1/CIP1/SDI1. Tsuji T,Miyazaki M,Fushimi K,Mihara K,Inoue Y,Ohashi R,Ohtsubo M,Hamazaki K,Furusako S,Namba M Biochem Biophys Res Commun. 1998 Jan 14;242(2):317-21 |
Pubmed id:8835345 |
Persistence of hepatitis C virus RNA in established human hepatocellular carcinoma cell lines. Tsuboi S,Nagamori S,Miyazaki M,Mihara K,Fukaya K,Teruya K,Kosaka T,Tsuji T,Namba M J Med Virol. 1996 Feb;48(2):133-40 |
Pubmed id:7524639 |
[A new liver support system composed of functional human cells and a radial-flow bioreactor]. Kawada M,Nagamori S,Aizaki H,Fukaya K,Niiya M,Matsuura T,Sujino H,Hasumura S,Shimizu K,Yoshida H Hum Cell. 1994 Jun;7(2):95-100 |
Pubmed id:1701409 |
Integration of hepatitis B virus DNA into cells of six established human hepatocellular carcinoma cell lines. Fujise K,Nagamori S,Hasumura S,Homma S,Sujino H,Matsuura T,Shimizu K,Niiya M,Kameda H,Fujita K Hepatogastroenterology. 1990 Oct;37(5):457-60 |
Pubmed id:2174476 |
[Analysis for the integrated hepatitis B virus genome in cells of established human hepatocellular carcinoma cell line JHH-7]. Fujise K,Nagamori S,Hasumura S,Homma S,Fujita K,Sujino H,Matsuura T,Shimizu K,Niiya M,Ohno T Nihon Shokakibyo Gakkai Zasshi. 1990 Sep;87(9):1851-5 |
Pubmed id:1707654 |
[Establishment and characterization of a human hepatocellular carcinoma cell line JHH-7 producing alpha -fetoprotein and carcinoembryonic antigen--changes in secretion of AFP and CEA from JHH-7 cells after heat treatment]. Homma S,Nagamori S,Fujise K,Hasumura S,Sujino H,Matsuura T,Shimizu K,Niiya M,Kameda H Hum Cell. 1990 Jun;3(2):152-7 |
Pubmed id:2856500 |
[Effects of TNF on human hepatocellular carcinoma cell lines and their modification by hyperthermia]. Hasumura S,Nagamori S,Fujise K,Homma S,Sujino H,Matsuura T,Shimizu K,Niiya M,Kameda H,Satomi N Hum Cell. 1988 Jun;1(2):238-44 |
Pubmed id:none |
ヒト肝癌細胞株に対するTumor necrosis factorの影響 蓮村哲 永森静志 藤瀬清隆 本間定 筋野甫 松浦知和 清水恵一郎 新谷稔 里見信子 医学のあゆみ 143(8), 655-656 (1987) |
Pubmed id:none |
樹立ヒト肝癌株細胞中のB型肝炎ウイルスゲノム 藤瀬 清隆, 藤多 和信, 永森 静志, 蓮村 哲, 本間 定, 筋野 甫, 松浦 知和, 清水 恵一郎, 新谷 稔, 大野 典也, 亀田 治男 肝臓 29(5), 697-698 (1988) |
Pubmed id:none |
転移の治療実験 村上 孝司 済木育夫 実験医学 16(16), 162-167 (1998) |
Pubmed id:none |
ヒト肝癌細胞JHH7からの geranylgeranyl pyrophosphate (GGPP) synthase cDNAの単離と発現に関する検討 新規な遺伝子機能アッセイ法の開発 三沢典彦 脂質生化学研究 41, 293-296 (1999) |
Pubmed id:none |
株化肝細胞癌の遺伝子発現 Gene expression in human hepatocellular carcinoma cell lines 村上 孝司 山田 雄次 済木 育夫 松浦 知和 蓮村 哲 永森 静志 組織培養研究 18(3), 221-228 (1999) |
Pubmed id:none |
ヒト肝細胞癌由来株JHH-7の分子生物学的特徴とRAR-α特異的結合性を有する化合物TAC-101に対する反応性 大家 真治 村上 孝司 北里 健二 細胞 33(11), 32-35 (2001) |
Pubmed id:none |
転移の治療実験 村上 孝司 済木育夫 実験医学16(16),162-167 (1988) |
Pubmed id:none |
ヒト肝細胞癌由来株JHH-7の分子生物学的特徴とRAR-α特異的結合性を有する化合物TAC-101に対する反応性 大家 真治 村上 孝司 北里 健二 細胞 33(11),32-35 (2001) |
Images |
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Movies |
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LOT Information
細胞番号 | JCRB1031 | 細胞名 | |
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培養ロット番号 | 10312012 | 培養種別 | distribution |
培地 | Williams' E medium with 10% fetal bovine serum (GIBCO Cat. # 10099) | 培養温度 | 37 C |
継代時細胞数(濃度) | 1.5 - 2.1 x 10^5 cells/mL | 継代方法 | Cells were harvested after treatment with 0.25% trypsin and 0.02% EDTA. |
増殖速度 | approx. 29 hrs. | 凍結時生細胞濃度 | 1.9 x 10^6 |
凍結時生細胞率 | 98.4 | 使用抗生物質 | free |
継代数 | Unknown (10 at bank) | PDL数(プライマリ) | |
マイコプラズマ検出 | - | 細菌汚染検出 | - |
真菌汚染検出 | - | アイソザイム検査・動物名 | Confirmed as human by NP, G6PD (type B), MD. |
染色体モード | 染色体情報 | ||
表面抗原 | DNA Profile (STR) | ||
接着性 | Yes | 導入外部遺伝子 | |
凍結培地 | 10% DMSO, 20% FBS - Williams' E | 炭酸ガス濃度 | 5% |
解凍後生細胞率 | 追加情報 |
細胞番号 | JCRB1031 | 細胞名 | |
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培養ロット番号 | 06252008 | 培養種別 | distribution |
培地 | William's E medium with 10% fetal bovine serum (GIBCO Cat.# 10099, lot 484375) | 培養温度 | 37 C |
継代時細胞数(濃度) | approx. 2 x 10^5 cells/ml | 継代方法 | 0.25% trypsin and 0.02% EDTA in Ca, Mg-free PBS. Subculture twice a week. |
増殖速度 | 30 hrs | 凍結時生細胞濃度 | 8.8 x 10^6 |
凍結時生細胞率 | 96 | 使用抗生物質 | free |
継代数 | Unknown (8 at bank) | PDL数(プライマリ) | |
マイコプラズマ検出 | - | 細菌汚染検出 | - |
真菌汚染検出 | - | アイソザイム検査・動物名 | Confirmed as human by NP, G6PD (type B), MD. |
染色体モード | 染色体情報 | ||
表面抗原 | DNA Profile (STR) | ||
接着性 | Yes | 導入外部遺伝子 | |
凍結培地 | 10% DMSO, 20% FBS - William's E | 炭酸ガス濃度 | 5% |
解凍後生細胞率 | 追加情報 |
細胞番号 | JCRB1031 | 細胞名 | JHH-7 |
---|---|---|---|
培養ロット番号 | 12212002 | 培養種別 | distribution |
培地 | Williams'E medium with 10% fetal bovine serum (Intergen RB52305). | 培養温度 | 37 C |
継代時細胞数(濃度) | 4.4 x 10^4 cells/sq.cm. | 継代方法 | Cells were harvested after treatment with 0.25% trypsin and 0.02% EDTA. Medium change once a week. Subculture once a week. |
増殖速度 | NT | 凍結時生細胞濃度 | 3.1 x 10^6 |
凍結時生細胞率 | 99.0 | 使用抗生物質 | free |
継代数 | P4* | PDL数(プライマリ) | NT |
マイコプラズマ検出 | - | 細菌汚染検出 | - |
真菌汚染検出 | - | アイソザイム検査・動物名 | NT |
染色体モード | NT | 染色体情報 | NT |
表面抗原 | NT | DNA Profile (STR) | |
接着性 | Yes | 導入外部遺伝子 | NT |
凍結培地 | Culture medium containing 5% DMSO. | 炭酸ガス濃度 | NT |
解凍後生細胞率 | 追加情報 |
Images |
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細胞番号 | JCRB1031 | 細胞名 | JHH-7 |
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培養ロット番号 | 01182016 | 培養種別 | distribution |
培地 | Williams' medium E with 10% fetal bovine serum (FBS; GIBCO Cat. # 10091). | 培養温度 | 37 C |
継代時細胞数(濃度) | approx. 2 x 10^5 cells/mL | 継代方法 | Cells were harvested after treatment with 0.25% trypsin and 0.02% EDTA. |
増殖速度 | approx. 26 hrs. | 凍結時生細胞濃度 | 4.8 x 10^6 |
凍結時生細胞率 | 95.2 | 使用抗生物質 | free |
継代数 | Unknown (8 at bank) | PDL数(プライマリ) | |
マイコプラズマ検出 | - | 細菌汚染検出 | - |
真菌汚染検出 | - | アイソザイム検査・動物名 | |
染色体モード | 染色体情報 | ||
表面抗原 | DNA Profile (STR) | ||
接着性 | Yes | 導入外部遺伝子 | |
凍結培地 | 10% DMSO, 20% FBS - Williams' medium E | 炭酸ガス濃度 | 5% |
解凍後生細胞率 | 95.2 | 追加情報 |
細胞番号 | JCRB1031 | 細胞名 | JHH-7 |
---|---|---|---|
培養ロット番号 | 06252021 | 培養種別 | distribution |
培地 | William's medium E with 10% fetal bovine serum (FBS; Biowest Cat. # S1820-500) | 培養温度 | 37 C |
継代時細胞数(濃度) | 0.8 - 2.0 x 10^5 cells/mL | 継代方法 | Cells were harvested after treatment with 0.25% trypsin and 0.02% EDTA. |
増殖速度 | approx. 22 hrs. | 凍結時生細胞濃度 | 2.6 x 10^6 |
凍結時生細胞率 | 98 | 使用抗生物質 | free |
継代数 | Unknown (8 at bank) | PDL数(プライマリ) | |
マイコプラズマ検出 | - | 細菌汚染検出 | - |
真菌汚染検出 | - | アイソザイム検査・動物名 | |
染色体モード | 染色体情報 | ||
表面抗原 | DNA Profile (STR) | ||
接着性 | Yes | 導入外部遺伝子 | |
凍結培地 | 10% DMSO, 20% FBS - William's medium E | 炭酸ガス濃度 | 5% |
解凍後生細胞率 | 97 | 追加情報 |