-Detailed Information [JCRB0161]-

JCRB0161 Kasumi-4

細胞情報

Important Notice(s)

On the particles appear in cultures of Kasumi-series cell lines

--- On the small particles appear in cultures of Kasumi-series cell lines ---

(--- Kasumiシリーズ細胞株の培養に現れる微粒子について　---)

During the cultures of Kasumi-series cell lines, self propagating small particles, like microorganisms, appear in the culture medium. These particles were investigated by Iwate University (*1), and were reported that they are consisted mainly of hydroxy apatite and fetuin but are lacking nucleic acids (DNA, RNA). These revealed not to be mycoplasmal, bacteria or yeast conatmination.

(*1) Harasawa,R. et al., In vitro Cell. Dev. Biol. Anim. 42: 13-15, 2006.

At present, it is unknown why these particles increase, and there is no evidence that these are live particles.

Kasumiシリーズ細胞株の培養には微生物様の微細な顆粒が出現して増加します。この顆粒は、岩手大の解析により、リン酸カルシウムとフェチュインを主成分とし、核酸がみられないことが確認されており、マイコプラズマ、細菌、真菌（酵母）ではありません。この粒子がなぜ増えるのかは不明であり、生物であるという証拠はありません。

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Cultivation of Kasumi-4

[Cultivation of Kasumi-4]

The size of Kasumi-4 is very small, and when you collect the cells by centrifugation, please centrifuge the cells at 1500 rpm for 10 min.

When you start the culture, please seed the cells to T-25 flask with 2-3 mL of medium and the flask should be slanted (or to small well) so as to achieve the local high cell density. 

The growth of Kasumi-4 is very slow. The recommended split ratio is 1/2.

When you cultivate GM-CSF dependent cell lines, the GM-SCF should be newly added from its stock solution "in each time" of subcultivation or dilution.

If you passage the cells by dilution for suspension culture, please add the GM-CSF to the 10 ng/mL against to TOTAL VOLUME of medium (old medium + new medium).
This is because the GM-CSF may be consumpted by the cells in the old medium.

For example, if you dilute the cells by adding 10 mL new medium to 10 mL old medium, please add new GM-CSF to 10 ng/mL against 20 mL medium.

[Kasumi-4の培養]

Kasumi-4は細胞のサイズが大変小さく、細胞を遠心で回収する際には1500 rpm, 10分の遠心を推奨します。

培養開始時には、局所的な高細胞密度となるよう、細胞は2-3 mLの培地にサスペンドしてT-25フラスコで傾けて培養、または小さなウェルで培養を開始してください。

本細胞の増殖は極めて遅く、split ratioは1/2を推奨しています。

Kasumi-4はGM-CSF依存性の細胞です。GM-CSFはストック溶液から継代や希釈の都度添加するようにしてください。

希釈により継代する際には、GM-CSFは、培地の全容量（古い培地と新しい培地の総量）に対して10 ng/mLとなるように添加します。これは培養中の培地でGM-CSFが消費されている可能性があるためです。

たとえば10 mLの培養中の培地に10 mLの新しい培地を添加する際には、20 mLの培地量に対して新たに10 ng/mLとなるようGM-CSFを添加します。







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細胞種類：一般細胞 (細胞分譲手数料はこちら)

細胞番号(JCRB)	JCRB0161	細胞名	Kasumi-4
生物種(日本語)	ヒト	組織名(日本語)	血球・リンパ系
コメント(日本語)	白血病, 慢性骨髄性	プロフィール	A novel human leukemia cell line established from a patient with chronic myelogenous leukaemia (CML) in blast crisis.
別名		動物名	human
系統名		学名・属名	Homo
種名	sapiens	性別	F
年齢・月齢	6	細胞識別情報	available
（癌）原発組織名	blood	病歴情報	chronic myelogenous leukaemia (CML) in blast crisis.
転移の有無（Y/N）		（癌）転移組織名
遺伝的性質	t(9:22:11), overexpression of Evi-1 gene	細胞寿命	infinite
ｸﾗｲｼｽＰＤＬ		形態	myeloblast
一般性状	CD34+, CD33+, CD13+	細胞分類	tumor
細胞樹立者名	Asou,H.	細胞寄託者	Kyoizumi,S. & Asou,H
分譲時制限	free	コメント
入手年	2000	培養培地	RPMI1640 medium with 10-20% heat inactivated fetal calf serum and 10ng/ml GM-CSF.
継代方法	Subculture twice a week at split ratio of 1/2 by simple dilution. Suspension cell culture. The size of cells is small, and when you collect the cells, centrifuge at 1500 rpm for 10 min.	継代時細胞数	Split ratio = 1/2.
人種	Japanese	炭酸ガス濃度	5 %
採取組織名	blood	組織型

ウイルスDNA・RNA検出検査 (Detection of virus genome fragment by Real-time PCR)
ウイルスDNA 検出検査	tested				ウイルスRNA 検出検査	tested
	CMV	-	parvoB19	-		HCV	-	HTLV-1	-
	EBV	-	HBV	-		HIV-1	-	HTLV-2	-
	HHV6	-	HTLV-1	-		HIV-2	-	HAV	-
	HHV7	-	HTLV-2	-		-/negative. +/positive. nt/not tested. (positive (+) does not immediately mean the production of infectious viral particles.)
	BKV	-	HIV-1	-
	JCV	-	HIV-2	-
	ADV	-	HPV18	-
Notes

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Cellosaurus(ExPASy) Cellosaurus (ExPASy)はneXtProtプロジェクトの一環として、SIB - Swiss Institute of BioinformaticsのCALIPHOグループのAmos Bairoch博士によって開発されました。Cellosaurusは細胞株に関する様々な情報を集約させたデータベースになっています。JCRB細胞バンクに登録されている細胞株については、右のリンクから情報を得ることができます。	CVCL_0613

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Cellosaurus(ExPASy) Cellosaurus (ExPASy)はneXtProtプロジェクトの一環として、SIB - Swiss Institute of BioinformaticsのCALIPHOグループのAmos Bairoch博士によって開発されました。Cellosaurusは細胞株に関する様々な情報を集約させたデータベースになっています。JCRB細胞バンクに登録されている細胞株については、右のリンクから情報を得ることができます。

CVCL_0613

Reference
Pubmed id:8611478	Establishment of a myeloid leukaemia cell line (Kasumi-4) with t(9;22;11)(q34;q11;q13), inv(3)(q21q26) and the EVI1 gene activation from a patient with chronic myelogenous leukaemia in blast crisis. Asou H,Eguchi M,Suzukawa K,Morishita K,Tanaka K,Date M,Hamamoto K,Kamada N Br J Haematol. 1996 Apr;93(1):68-74

Research results by users. Click！
Pubmed id:32180206	Kasumi leukemia cell lines: characterization of tumor genomes with ethnic origin and scales of genomic alterations. Kasai F,Asou H,Ozawa M,Kobayashi K,Kuramitsu H,Satoh M,Kohara A,Kaneko Y,Kawamura M Hum Cell. 2020 Jul;33(3):868-876

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細胞番号	JCRB0161	細胞名	Kasumi-4
培養ロット番号	04282011	培養種別	distribution
培地	RPMI1640 medium with 10ng/ml GM-CSF and 20% heat inactivated fetal bovine serum.	培養温度	37 C
継代時細胞数（濃度）	1.5-5x10^5 cells/ml	継代方法	Dilution (split ratio=1/2)
増殖速度	NT	凍結時生細胞濃度	2.89x10^6
凍結時生細胞率	83.6	使用抗生物質
継代数	p8*	PDL数（プライマリ）	NT
ﾏｲｺﾌﾟﾗｽﾞﾏ検出	-	細菌汚染検出	-
真菌汚染検出	-	ｱｲｿｻﾞｲﾑ検査・動物名	NT
染色体モード	NT	染色体情報	NT
表面抗原	NT	DNA Profile (STR)	D5S818:11,12 D13S317:10,12 D7S820:8,10 D16S539:9,13 VWA:16,18 TH01:8,9 AM:X TPOX:8,11 CSF1PO:10,12
接着性	No	導入外部遺伝子	NT
凍結培地	Cell Banker BLC-1(Nihon Zenyaku Industries)	炭酸ガス濃度	5 %
解凍後生細胞率		追加情報

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細胞番号	JCRB0161	細胞名	Kasumi-4
培養ロット番号	01122018	培養種別	distribution
培地	RPMI1640 medium(GIBCO) with 20% heat inactivated fetal bovine serum(SIGMA12J396) and 10 ng/ml GM-CSF.	培養温度	37 C
継代時細胞数（濃度）	1.4-1.9x10^5 cells/ml	継代方法	dilution
増殖速度	NT	凍結時生細胞濃度	2.0x10^6
凍結時生細胞率	89.0	使用抗生物質	free
継代数	p9*	PDL数（プライマリ）	NT
ﾏｲｺﾌﾟﾗｽﾞﾏ検出	-	細菌汚染検出	-
真菌汚染検出	-	ｱｲｿｻﾞｲﾑ検査・動物名	NT
染色体モード	NT	染色体情報	NT
表面抗原	NT	DNA Profile (STR)	D5S818:11,12 D13S317:10,12 D7S820:8,10 D16S539:9,13 VWA:16,18 TH01:8,9 AM:X TPOX:8,11 CSF1PO:10,12
接着性	No	導入外部遺伝子	NT
凍結培地	BAMBANKER(LYMPHOTEC Inc.,CS-02-001,NIPPON Genetics Co., LTD)	炭酸ガス濃度	5%
解凍後生細胞率	NT	追加情報	Cell viability of this cell line is relatively low after freeze-thaw. For successful reestablishment of the cell culture, collect cells from two vials into one tube in a total of 10ml medium. Then, centrifuge cells at higher speed, 1500 rpm for 10 min, than usual. Resuspend the cells in fresh 2ml medium and start cell culture at high cell density using either one 6 cm culture dish or one 25 cm culture flask.

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国立研究開発法人 医薬基盤・健康・栄養研究所 JCRB細胞バンク

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